实验原理
细胞迁移实验是研究细胞在体外条件下移动能力的一种实验方法，广泛应用于细胞生物学、肿瘤学和免疫学等领域。细胞迁移实验基于细胞对环境变化的反应能力，这些变化可以是物理的（如空间间隙）或化学的（如梯度差）。实验目的是模拟并观察细胞如何在这些条件变化下移动，从而了解细胞迁移的机制和影响因素。
实验步骤
取处理好的细胞，加入1mIPBS清洗细胞，0.25%胰酶分别消化收集1000-1500mmp 离心3-5 min，去上清；
加入1ml PBS润洗两次，清洗掉残余血清，去上清；
无血清培养基重悬细胞，细胞计数板计数，无血清培养基稀释细胞浓度至3x10＾５cell/ml，备用；
在24孔板中预先加入800μl 10%FBS的培养基(含双抗)，并放入transwel小室，1h后在transwel上室分别接入200μl各组细胞悬液，37℃，5%CO培养箱培养24h;
取出transwell，用PBS小心清洗小室一遍，用70%冰乙醇溶液固定细胞1h；
用0.5%结晶紫染液染色，室温中放置20min，PBS清洗一下，用于净的球将上室一侧的未迁移的细胞擦干净；
显微观察拍照，200倍照片，3张/组。
注意事项
合理控制细胞数量是取得实验成功的关键，正式实验前可先做预实验，摸索适当的密度，不然可能会影响结果的准确性。
在取出小室孔板进行观察前，先用PBS冲洗，以去除未贴附或悬浮的细胞，洗完后应立即固定染色，防止细胞过于干燥，染色时间也不能太长或太短。
小室需确认放平于孔板中且细胞悬液要混匀，建议滴加，整个实验过程中小室勿倾斜晃动，以防止细胞铺不均匀。
滴加细胞悬液的过程中要注意防止气泡产生。
细胞小室孔板的孔径选择：8μm规格适配实体瘤细胞的跨膜运动分析，而3μm微孔系统则专用于淋巴细胞亚群的定向趋化行为检测。
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